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          如何提取膜蛋白
          瀏覽次數(shù):7830發(fā)布日期:2012-06-12

           

          I. n-Octyl-β-D-glucoside提取大腸桿菌乳糖輸送體

          1. 試劑

          ·lacY recombinant大腸桿菌T206制備的膜泡

          ·n-Octyl-β-D-glucoside

          ·膽酸鈉 (Sodium cholate)

          ·Dithiothreitol (DTT)

          ·取自大腸桿菌的磷脂 (Avanti Biochem.公司

          ·DEAE-Sepharose CL-6B (GE Healthcare公司

          ·磷酸鉀 (Potassium Phosphate)

          ·乳糖 (lactose)

          ·尿素生化級(jí)

          ·磷酸

          2. 方法

          以下操作,在沒有特指時(shí)的溫度是指4℃,用Vortex mixer攪拌。

          1) 要得到約10 mg的蛋白質(zhì),可以取外翻型膜泡 (inside-out vesicles) 12.5 mg,加入1 ml緩沖液 (50 mmol/l 磷酸鉀,pH7.5、0.5 mmol/l DTT10 mmol/l乳糖)制成懸濁液。

          2) 在室溫條件下,邊攪拌,邊滴加等量的尿素溶液(10 mmol/l)

          3) 在冰浴中放置10分鐘后,在175,000× 的速度條件下離心1小時(shí)。

          4) 沉淀用1.75 ml緩沖液 (50 mmol/l磷酸鉀,pH7.5) 制成懸濁液。邊攪拌,邊加入膽酸鈉溶液 (20%w/v,pH7.8),終濃度為6%。

          5) 在冰浴中放置20分鐘后,在26,000×g的速度條件下離心15分鐘。

          * 以上操作是為了去除膜中不需要的蛋白質(zhì)。

          6) 沉淀用5 ml緩沖液 (10 mmol/l磷酸鉀,pH5.8) 制成懸濁液,離心,重復(fù)此步驟1-2次。

          7) 沉淀用1.45 ml緩沖液 (10 mmol/磷酸鉀,pH5.8) 制成懸濁液,加入17.5 l DTT溶液 (100 mmol/l),13 mg乳糖,131 l磷脂溶液 (50 mg/ml),攪拌均勻。

          8) 在上述溶液中加入146 µl n-Octyl-β-D-glucoside (15% w/v,10 mmol/l磷酸鉀,pH5.8),使終濃度為1.25%

          蛋白質(zhì)/磷脂/去垢劑的比例約為1:3:10。

          9) 攪拌時(shí)請(qǐng)注意不要起泡沫,在冰浴中放置10分鐘后攪拌,然后在175,000× 的速度下離心1小時(shí)。

          10) 取上清,用磷酸溶液 (10 mmol/l 磷酸, 1.25% n-Octyl-β-D-glucoside) 調(diào)節(jié)pH5.8。

          11) DEAE-Sepharose 純化柱純化1 ml蛋白質(zhì)提取液含約300 µg 蛋白質(zhì)。

          溶出液:10 mmol/l 磷酸鉀,pH5.8,1 mmol/l DTT,20 mmol/l乳糖, 0.25 mg 磷脂/ml, 1.25%(w/v) n-Octyl-β-D-glucoside

          II. n-Heptyl-β-D-thioglucoside提取腸炎弧菌的膜結(jié)合性 5'-核苷酸酶

          1. 試劑

          ·采用French Pressure法制備的膜泡

          ·n-Heptyl-β-D-thioglucoside

          ·EDTA-2K

          ·Dithiothreitol (DTT)

          ·Tricine

          ·MOPS

          ·Tris

          ·氯化鈉

          ·硫酸鎂

          ·2-Mercaptoethanol

          ·DEAE-Sepharose CL-6B (GE Healthcare公司

          2. 方法

          以下操作,在沒有特指時(shí)的溫度是指4℃。

          1) 取腸炎弧菌的的膜泡145 mg蛋白質(zhì)30 ml緩沖液(3 mmol/l Tricine-Tris、pH8.0、0.5 mmol/l EDTA-2K、1 mmol/l 2-Mercaptoethanol) 制成懸濁液。在冰浴中輕輕地?cái)嚢杓s30分鐘后,105,000×g離心1小時(shí)。

          2) 加入含有n-Heptyl-β-D-thioglucoside 40 mmol/l的緩沖液(20 mmol/l MOPS-Tris、pH7.55 mmol/l硫酸鎂、1 mmol/l DTT) 制成懸濁液,蛋白質(zhì)濃度約為1 mg/ml。在冰浴中輕輕地?fù)u勻約15分鐘。

          3) 105,000×g離心1小時(shí),得到5'-核苷酸酶的上清。

          4) DEAE-Sepharose 純化柱純化上清。溶出液:50 mmol/l MOPS-TrispH 8.0、5 mmol/l硫酸鎂、1 mmol/l DTT、40 mmol/l n-Heptyl-β-D-thioglucoside、100→400 mmol/l (梯度氯化鈉

          III. CHAPS提取巨噬細(xì)胞的細(xì)胞骨架

          1.試劑

          ·S.typhimurium LPS (Difco公司

          ·胎牛血清 (FBS)

          ·肝素 (heparin)

          ·Dulbecco's MEM (DMEM)

          ·Plasticcoverslip (SUMITOMO BAKELITE 公司、celldesk)

          ·PIPES

          ·HEPES

          ·GEDTA

          ·Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMASigma公司

          ·氯化鎂

          ·CHAPS (在硅膠干燥器中干燥約2周后使用

          2. 方法

          1) 用滅菌蒸餾水將 S.typhimurium LPS配制成200 µg/ml。給小鼠 (SLC-ICR7-10周齡腹腔注射,劑量為0.25 ml/只。

          2) 5-6天后,用10 mmol/l HEPES(添加10% FBS10 U/ml肝素、含DMEM pH7.1)洗凈腹腔,收集細(xì)胞。

          3) 4DMEM將貼壁的腹腔細(xì)胞離心洗凈3 (1,000 rpm,10分鐘/

          4) 用含有10% FBSDMEM調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度至10e6個(gè)/ml,移至培養(yǎng)皿中。

          5) 4的條件下,用FBS浸泡蓋玻片一個(gè)晚上,然后用DMEM洗凈10分鐘,將蓋玻片放入上述培養(yǎng)皿中。在CO2培養(yǎng)箱中37下孵育20分鐘每一張蓋玻片需要細(xì)胞液1 ml)

          6) 將蓋玻片一張一張放入4含有DMEM的培養(yǎng)皿中,用巴氏吸管吸掉非貼壁細(xì)胞。

          7) 在含有10% FBSDMEM中加入稀釋的PMA,在CO2培養(yǎng)箱中37下孵育20分鐘。

          8) 用室溫DMEM將貼付著細(xì)胞的蓋玻片洗凈10分鐘。

          9) 用室溫的PHEM 緩沖液 (60 mmol/l PIPES、25 mmol/l HEPES、10 mmol/l GEDTA、2 mmol/l氯化鎂、pH6.9)

          清洗2 (10分鐘/。

          10) 預(yù)先將蓋玻片放置在37PHEM緩沖液中約5分鐘。

          11) PHEM緩沖液配制0.5%CHAPS溶液*2,*3,取15 ml加入*4直徑為6 cm的培養(yǎng)皿中,將蓋子反過來蓋在培養(yǎng)皿上,放置在37培養(yǎng)箱中。

          將貼付著細(xì)胞的蓋玻片放在如上的培養(yǎng)皿中(2張蓋玻片/1個(gè)培養(yǎng)皿,放置3分鐘后會(huì)露出細(xì)胞骨架,這時(shí)輕輕振搖培養(yǎng)皿45-60秒。

          12) 37PHEM 緩沖液洗凈3分別為2-3分鐘,10分鐘,10分鐘,清洗后放回到室溫的PHEM 緩沖液里,細(xì)胞骨架樣品制備完成。

          *1 清洗不足的話,會(huì)降低細(xì)胞骨架露出率。

          *2 CHAPS溶液要在使用前1小時(shí)內(nèi)配制,混合時(shí)注意不要產(chǎn)生泡沫。CHAPS的濃度一定要準(zhǔn)確地配制成0.5% (8.132 mmol/l )。如果濃度過高,會(huì)增加從蓋玻片上掉落的細(xì)胞,一部分的細(xì)胞骨架會(huì)溶解下來。如果濃度過低,會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞膜的溶解效果差。

          *3 CHAPS的溶液量,1個(gè)直徑13.5 mm的培養(yǎng)皿需要6 ml以上。

          *4 請(qǐng)注意振搖過強(qiáng)的話,會(huì)增加細(xì)胞脫落。

          IV. CHAPS從原生質(zhì)體分離液胞

          1. 試劑

          ·Atriplex gmelini的綠葉中制得的原生質(zhì)體 (1.2 mol/l山梨糖醇中分離

          ·CHAPS

          ·GEDTA (EGTA)

          ·HEPES

          ·山梨糖醇

          ·Tris

          2.方法

          1) 1 ml 原生質(zhì)體放入巴氏瓶中*1。

          2) 加入50 ml緩沖液 (1.0 mol/l山梨糖醇、1 mmol/l GEDTA、0.5 mmol/l CHAPS、20 mmol/l HEPES-Tris、pH8.0)。120×g離心3分鐘。

          3) 收集上清液中的液胞1.2 ml)*2,放入巴氏瓶中。

          4) 用緩沖液 (1.0 mol/l 山梨糖醇、20 mmol/l HEPES-TrispH8.0) 稀釋19倍。120×g離心3分鐘, 回收上清液中懸浮的液胞。

          *1 0.5 mol/l 山梨糖醇分離原生質(zhì)體時(shí),添加10% Ficoll 400等,使原生質(zhì)體懸浮。

          *2 原生質(zhì)體的上清液不濃縮的話, 使用Ficoll 400等,需要提高溶液的比重。

           

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